養細胞這件事兒，看似簡單，然而卻常常因為各種原因，讓我們珍貴的實驗細胞一再受損或者死亡，今天學霸姐姐就結合多年實踐經驗和細胞培養指南，為大家講述細胞從復蘇、傳代到凍存等一系列過程及常遇到的那些你可能忽略的小卻重要的細節。

我們就從細胞的衣食住行到傳宗接代為大家逐一介紹，細胞培養時中常遇到的那些不可忽視的問題，及我們到底該如何解決

一、細胞的營養來源

針對大多數腫瘤細胞，營養配方一般為：90%合成培養基(DMEM、RPMI1640、MEM等)和10%胎牛血清(FBS);為了防止污染，可以加1%雙抗!

常見問題解答：

Q：針對不同細胞，細胞培養基配方一樣嗎?如何獲知呢?

A：不同細胞的培養基是不同的。一般ATCC購買的細胞，針對不同細胞株，會有詳細介紹，包括生長的狀態圖、培養基的類型等。如人源乳腺癌細胞MCF-7細胞一般為1640，人源肺癌細胞A549可用DMEM培養基。

Q：培養基為什么一般都是偏紅色?

A：因為培養基加了酚紅來顯示顏色，指示pH范圍為6-8，顏色會由黃變為紫紅。這是為了我們能更直觀觀察培養液的變化，如變黃，則代表偏酸，偏堿性了就顯示偏紫色。一般來說，細胞吸收營養后，變黃后就暗示我們要換培養基啦!所以密切觀察很重要哦!

Q：大多數細胞系可以在不止一種培養基中生長，那可以替換嗎?

A：不建議更換ATCC指定的培養基，因為當培養基改變時，細胞的性質可能也會變化。

Q：若是細胞生長緩慢，是否可以增加血清比例?

A：可以!

二、細胞的居住環境

舒適無菌的環境是細胞健康生活的重要基礎。如下圖為培養細胞的器皿，包括形狀、規格、用途多樣的培養瓶、培養皿及培養板。最終住進37℃，5%CO2的恒溫培養箱。

常見問題解答：

Q：細胞培養板規格不一，如何正確選用?

A：根據不同規格的細胞培養皿/板容量及用途，如流式一般用 6 孔，爬片一般用 24 孔，MTT 一般用 96 孔等，具體信息如下圖所示：

Q：細胞培養皿和培養瓶區別?

A：就細胞培養狀態來說，培養瓶和培養皿沒有太大區別，主要在于安全系數(培養瓶>培養皿)、培養細胞數量(大培養瓶>培養皿)。但是培養瓶成本也會相對較高，因此無特殊要求，一般選擇培養皿即可。

三、細胞的復蘇與凍存(原則是慢凍速融)

1. 細胞復蘇：指將凍存的細胞解凍之后重新培養，細胞恢復生長的過程。

復蘇過程如下圖所示：

常見問題解答：

Q：為什么細胞復蘇后，很多難以貼壁?

A：忽略培養基的問題，主要考慮細胞凍存時狀態差或者復蘇時動作太慢導致細胞死亡。切記最重要的融化速度要快，可不時搖動冷凍管，使之盡快通過最易受損的溫度段(-5～0℃)。

Q：為什么細胞貼壁了，卻長不起來?

A：此時需要考慮的是細胞密度問題，一些細胞傾向于維持一定的密度，若復蘇的細胞生長緩慢，可將細胞轉移到較小的培養瓶/皿中培養。

2. 細胞凍存 將細胞放在低溫環境(-70℃~-196℃)，細胞內的代謝降低，可最大限度的保存細胞活力，以便長期儲存。

常見問題解答：

Q：目前細胞凍存液多采用的什么配方?

A：目前細胞凍存多采用DMSO二甲基亞砜或甘油作保護劑，細胞凍存液的配方有很多種，如培養基：血清：DMSO=7:2:1或8：1：1或5：4：1，或直接用血清：DMSO=9:1，一般高濃度血清有助于維護細胞活力，復蘇存活率在80%～90%以上。

Q：若沒有細胞凍存盒，我們該怎么辦?

A：可先將凍存管放入4℃冰箱中10min，再移至-20℃冰箱30min，-80℃冰箱2h或過夜，最后放入液氮罐內。為了節約時間，還可直接在凍存盒外包裹一團棉花，用棉花代替凍存盒緩慢降溫的特點，將細胞轉移至-80℃冰箱過夜，再轉移至液氮保存。

Q：細胞凍存時對細胞量有要求嗎?

A：細胞復蘇時會有一定的細胞死亡，因此細胞的濃度應足夠高，起始濃度106—107個/ml/管;

四、細胞的傳代培養

細胞傳代：細胞在培養過程中不斷增殖，培養皿/瓶空間有限，當細胞接觸過密，生長就會受到抑制，影響細胞狀態，因此我們要把其中一部分細胞分到別的培養皿/瓶里。

常見問題解答：

Q：為什么我們總說選擇對數期細胞傳代?

A：如下圖：細胞的生長和分裂，一般遵循以下模式：停滯期，對數期(指數期)，平穩期(平臺期)和衰退期。為了確保活力，遺傳穩定性和表型穩定，必須使細胞保持在對數期。

Q：那如何確定細胞對數期?

A：根據上述細胞生長曲線，為了確保活力，必須使細胞保持在對數期就傳代，所以一定不能等到細胞長滿100%融合時才去消化傳代。一般細胞長到 70% -80%左右即可傳代。

Q：一般細胞傳代都是1分2嗎?

A：要根據不同細胞而定，如有的生長很快，比如說4T1細胞，傳代取離心懸液的十分之一就已經足夠了。有的又特別慢，比如 BT474。此時我們就要多觀察摸索最合適的傳代比例。

Q：消化很關鍵嗎?

A：不得不說，細胞狀態差，很多時候與傳代時胰酶消化密切相關。一般腫瘤細胞消化1-2min即可。但是每一種細胞貼壁能力不同，因此對胰酶的反應也不同，我們需要密切跟蹤。一般肉眼觀察到貼壁細胞層能移動即可終止;而非細胞全部分散成單個。如下圖分別是正確和錯誤的消化時間：

Q：部分比較難消化的細胞怎么辦?

A：可放于37℃培養箱消化。以MDA-MB-231/PAX紫杉醇耐受細胞為例，放于37℃培養箱消化5-8min，輕輕拍打，才見細胞成片移動，因此針對難消化細胞一定要在顯微鏡下密切觀察。

Q：幾天換培養基?

A：正常情況下，培養液偏紅色。如果細胞維持在pH6.5～6.6條件下，培養基變黃，說明培養液中代謝產物已堆積到一定量，細胞會脫落死亡，需要更換新鮮培養液。一般細胞生長旺盛時1～2天換一次，生長緩慢時，3～4天亦可。針對復蘇后的細胞，建議隔天換液。

Q：每天觀察細胞有必要嗎?

A：一般的腫瘤細胞我們是隔天傳代，但是切不可忽略對細胞的觀察，一定要每天都要去看一下細胞，肉眼觀察培養基狀況、顯微鏡下觀察細胞生長狀況。記住，是每天。

Q：如果細胞形態不清晰或有異物等，如何處理?

A：可以考慮如下操作：首先，倒掉舊的培養基，用新的培養基或者PBS洗滌2-3次，再開始正式的消化、吹打。其次，把吹打下來的細胞懸液加入到新的培養瓶內。后續再密切觀察。

Q：細胞污染怎么辦?

A：如發現細胞有污染，一般建議丟棄。如果細胞非常寶貴，可試著加入含抗生素的培養基反復清洗，并用抗生素含量高的培養基培養，并經常更換培養基;

小諾今天的介紹就到這里了，細胞培養是后續實驗的基石，看似簡單的傳代卻有著大學問，希望大家在實踐操作中，可以結合我們為大家提供的小細節，多多聯系和摸索，相信你的細胞會養的更加漂亮!